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    COSMOSIL Cholester色譜柱

    產品簡介

    COSMOSIL Cholester色譜柱 是反相體系的HPLC柱,膽甾醇鍵合硅膠填料,具有和傳統的烷基鍵合C18、C30硅膠填料一樣的疏水性,但是在相同的分析條件下,Cholester對疏水化合物的立體選擇性好。

    產品型號:
    更新時間:2025-11-21
    廠商性質:代理商
    訪問量:1907
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    產品描述

    COSMOSIL Cholester色譜柱是反相體系的HPLC柱,膽甾醇鍵合硅膠填料,具有和傳統的烷基鍵合C18、C30硅膠填料一樣的疏水性,但是在相同的分析條件下,Cholester對疏水化合物的立體選擇性好。

    Cholester與C18柱具有相同的疏水性。因此使用Cholester代替C18柱或C30柱時,不需要改變分析條件。與傳統的C18柱相比,Cholester具有更強的選擇性和分離同分異構體或結構類似物的能力,它可以很好的代替傳統C18色譜柱。 

    COSMOSIL Cholester色譜柱

    · 膽甾醇基固定相

    · 使用條件與C18柱相同

    · 提高了立體選擇性和幾何異構體的分離度

    · 適用于天然物的分離

    規格


    色譜柱5μm Cholester
    內徑(mm)2.03.04.6102028
    柱長(mm)ALLALLALL20-15025020-100150-250ALL
    出廠溶劑乙腈 / 水 = 60 / 40甲醇 / 水 = 70 / 30甲醇 / 水 = 80/ 20甲醇 / 水 = 70 / 30甲醇 / 水 = 80/ 20
    沖洗方法
    1. 去除色譜柱內的緩沖液,鹽,酸的方法:使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。
      例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

    2. 沖洗色譜柱內附著物的方法,基線不穩時的解決方法

    • 樣本不是蛋白質時,使用甲醇或四氫呋喃沖洗。

    • 樣品是蛋白質時,使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗

    保存方法
    1. 短期(數日)保存:
      使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。
      例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

    2. 長期(1個月以上)保存:
      使用后,先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱,再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,保存。

    pH范圍pH2~pH7.5
    最大耐壓20MPa15MPa
    溫度范圍最高可耐60度,建議在20~50度下進行分析。
    可使用的溶劑

    除堿溶液和強酸溶液(pH1.5以下)以外都可以使用。(強堿溶液會使硅膠溶化,強酸溶液會使固定相脫落)
    注意點:
    溶劑粘度過高會導致壓力上升,請將壓力控制在20Mpa以下。 使用酸性流動相或凝固點高的溶劑后,必須清洗色譜柱。

    注意事項
    • 一般情況下緩沖液濃度為0.005~0.02 mol/L即可。

    • 流動相在使用前一定要通過0.5μm以下的濾膜過濾。

    • 蛋白質反相模式分析時,請使用大孔徑色譜柱(孔隙直徑300?) COSMOSIL Protein - R(粒徑5μm)。



    色譜柱2.5μm Cholester
    內徑(mm)2.03.0
    柱長(mm)ALLALL
    出廠溶劑乙腈 / 水 = 50 / 50
    沖洗方法
    1. 去除色譜柱內的緩沖液,鹽,酸的方法:使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。
      例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

    2. 沖洗色譜柱內附著物的方法,基線不穩時的解決方法

    • 樣本不是蛋白質時,使用甲醇或四氫呋喃沖洗。

    • 樣品是蛋白質時,使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗

    保存方法
    1. 短期(數日)保存:
      使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。
      例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

    2. 長期(1個月以上)保存:
      使用后,先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱,再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,保存。


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